一条基因失去功能,究竟是被“剪掉”了,还是被细胞“修坏”了?答案藏在DNA双链断裂后的修复选择里。ZFN、TALEN和CRISPR/Cas9负责识别并切开目标DNA,真正决定编辑结果的,则是NHEJ或HDR等修复通路。本文将从DNA双链断裂讲起,拆解三类常见编辑工具的工作方式,并介绍海星生物基因敲除服务所采用的大片段删除策略。
DNA双链断裂(DSBs)DSB(DNA double-strand break)是同一DNA分子的两条互补链在相近位置同时断开,DNA骨架的连续性因此被切断。它可由复制压力、辐射或化学损伤自然产生,也可由Cas9等核酸酶定点制造。未及时或错误修复可能造成序列丢失、倒位、易位,甚至细胞死亡;基因编辑则利用细胞随即启动的修复反应,把这次“损伤”转化为可设计的序列改变。

图源:Tan J, et al. MedComm. 2023, Fig.1,CC BY 4.0;DOI:[10.1002/mco2.388](https://doi.org/10.1002/mco2.388)
敲除真正依靠的,是细胞“修DNA”
ZFN、TALEN和CRISPR/Cas9虽然导航方式不同,核心都相似:先在目标DNA制造DSBs,再借细胞修复形成结果。
1. 非同源末端连接(non-homologous end joining,NHEJ)
经典同源性非依赖性通路,因为它涉及粘性或平末端的直接连接,并且通常会在此过程中引入小的插入和缺失(indel)。快,但容易“修错”,若indel造成阅读框移位或提前终止,蛋白便可能失活,因此常用于敲除。
DSB出现后,Ku70–Ku80异二聚体(Ku复合体)夹住断端,招募DNA-PKcs形成DNA-PK(可激活Artemis并调节修复)并桥接;Artemis(核酸酶,可切割5'和3'突出端,使其适合连接)和DNA聚合酶按需修剪或补平,最后由XRCC4–XLF–DNA连接酶IV封口。连接可能精确,也可能留下indel;若Cas9靶序列仍完整,会再次被切割,最终常富集造成移码或提前终止的修复结果,实现敲除。
2. 同源定向修复(Homology directed repair,HDR)
使用同源序列作为修复模板,因此是DSB修复的更准确机制。如果用于修复的DNA模板与DSB的原始DNA序列相同,则该过程通常是无错误的,或者如果模板DNA中存在这些修饰,它可以将特定突变引入受损的DNA。提供带同源臂的供体DNA后,细胞可按模板替换或插入序列,适合精准突变、敲入及经典基因打靶;但效率受细胞类型和细胞周期影响,通常比NHEJ更难。
DSB后,MRN_Ctlp切除5′端,形成ssDNA 3'突出端(既可以作为链侵袭所需蛋白质的底物,也可以作为DNA修复合成的引物);RPA保护单链,BRCA2帮助RAD51装载。RAD51寻找同源序列并完成链侵入,形成D-loop;DNA聚合酶照模板延伸,随后捕获第二断端并连接。实验可提供带同源臂的供体DNA,精准替换或插入。HDR主要发生于有姐妹染色单体可用的S/G₂期,效率通常低于NHEJ。
图1 基因编辑工具及DNA修复结局图源:Duarte F, Déglon N. Front Neurosci. 2020, Fig.1,CC BY 4.0;DOI:[10.3389/fnins.2020.579062]
三种常见“分子剪刀”1. 锌指核酸酶(zinc-finger nuclease,ZFN)
ZFN作用需要两个FokI切割区域的二聚化,且至少需要一个识别单元结合DNA,一旦形成异源二聚体,就很可能造成脱靶效应,并最终导致DNA错配和序列改变,当断裂的数目超过了DNA的修复能力会产生较强的细胞毒性。ZFN另外一个缺点是亲和力不高,虽然有公司优化设计用较短接头连接ZF模块可以提高其特异性,但利用此技术来获得高质量基因编辑产品还有较长路要走。
2. 转录激活子样效应子核酸酶(transcription activator-like effector nuclease, TALEN)
TALEN是由转录激活因子样效应子(transcription activator-like effector, TALE),也称为TAL效应子代替了ZNF作为DNA结合域,并与Fok I切割结构域重组而成的核酸酶。TALEN通过TALE识别特异的DNA序列,使Fok I二聚化产生核酸内切酶活性,在特异的靶DNA序列上产生双链断裂以实现精确的基因组编辑。
3.CRISPR/Cas9
是一种由RNA指导Cas9核酸酶对靶向基因进行特定DNA修饰的技术。该技术利用靶点特异性的RNA将Cas9核酸酶带到基因组上的具体靶点,从而对特定基因位点进行切割导致突变。
在这一系统中,其中sgRNA中的crRNA向导序列(20核苷酸)特异性识别并结合目标基因的靶序列,crRNA通过碱基配对与tracrRNA结合形成双链RNA,此tracrRNA/crRNA二元复合体引导Cas9蛋白在crRNA向导序列靶定位点剪切双链DNA产生DSB(双链缺口),达到编辑基因组DNA的目的。在实际应用中,在sgRNA识别的目标基因的靶序列后必须要有一段PAM序列辅助sgRNA中向导序列的靶向定位。PAM序列即原间隔序列邻近基序(protospacer adjacent motifs),其一般形式为NGG,其作用是将间隔序列定位于入侵的噬菌体或质粒的DNA序列中。
图2 ZFN、TALEN与CRISPR-Cas9结构比较图源:Ashmore-Harris C, Fruhwirth GO. Clin Transl Med. 2020, Fig.1,CC BY 4.0;DOI:[10.1186/s40169-020-0268-z]
海星生物采用什么方法?
海星生物的CGKO基因敲除细胞系服务以CRISPR/Cas9大片段删除为核心:根据目标基因结构设计成对或多条gRNA,在关键外显子两侧制造DNA双链断裂;细胞通过NHEJ重新连接断端后,目标片段被删除,从而使基因功能缺失。与依赖单个小indel的移码策略相比,大片段删除的边界更明确,也便于通过跨断点PCR和测序确认。对于难以获得单克隆、完全敲除可能影响生长,或需要先观察表型的项目,还可选择基因敲除Cell Pool方案。

图3 海星生物基因敲除技术原理
服务通常包括:细胞与靶基因评估→gRNA设计及编辑体系准备→细胞转染或电转→筛选与扩增→PCR及测序验证DNA编辑→单克隆分离与筛选→WB等方法验证蛋白敲除→扩增、冻存与交付。具体步骤会根据细胞类型、靶基因以及单克隆或Cell Pool方案进行调整;Cell Pool可先用于快速表型评估,效果符合预期后再继续单克隆筛选。具体方案可联系海星生物进行技术咨询。

图4 海星生物基因敲除技术流程
海星生物(HySigen Biosciences)是一家聚焦基因编辑与细胞工程前沿技术的研发型科技公司,总部位于苏州,致力于为生命科学研究、精准医学诊断及生物制药开发提供核心工具与整体解决方案。公司建有超1200㎡符合国际标准的研发与生产平台,涵盖GMP-like细胞工程实验室、分子生物学中心及SPF级动物实验设施,技术团队由50余位资深科研人员组成,在CRISPR基因编辑、稳转细胞系构建、病毒载体包装等领域拥有深厚积累。
在基因敲除服务方面,海星生物的Cas9-Cell Line Gene Knock-Out(CGKO)平台已累计完成超500个基因编辑项目,构建了覆盖15个癌种、上万个人源基因的敲除细胞库。其优化后的Cas9X系统采用Cas9蛋白与gRNA复合物直接电转,敲除效率是传统质粒法的3-5倍;结合ClonePlus™技术,效率可再提升10-15倍,最快5周即可交付纯合敲除单克隆。服务提供包抗体、包WB验证的质量承诺,交付的敲除细胞株均经PCR和测序双重验证。其构建的ALB敲除HepG2细胞系已助力客户发表IF 81.2的高水平研究论文——让您的基因功能研究,从海星生物的高质量敲除细胞株开始。
技术服务:CRISPR/Cas9细胞基因编辑、CRISPR文库筛选/文库病毒/载体构建、分子诊断参考品/突变基因参考品/融合基因参考品、细胞稳转/细胞干扰
细胞试剂:HyCyte干细胞/原代细胞/细胞株、三系诱导培养试剂、细胞专用培养基、基因编辑试剂盒、病毒现货、预筛选胎牛血清





